- Hệ Thống Pipet Tự Động Assist Plus
- PIPETBOY pro
- Pipet Cơ Đơn Kênh: Integra
- Thiết bị chuẩn bị môi trường - đổ đĩa tự động
- Máy đọc MIC VIZION
- Máy Đo Độ Đục - Sensititre Nephelometer
- Tủ Sấy OMH
- Tủ Sấy OMS
- Tủ Sấy OGS
- Tủ Sấy OGH
- Tủ ấm lạnh: IR 250
- Tủ ấm lạnh: IMP180
- Tủ Ấm IMH180-S
- Tủ Ấm IGS 100
- Máy luân nhiệt PCR SimpliAmp
- HỆ THỐNG KIỂM NGHIỆM ATTP REAL-TIME PCR QUANTSTUDIO 5
- Cân Pha Loãng mẫu tự động
- Kit định danh Listeria mono
- TỦ LẠNH ÂM SÂU 700L
- Quanti - Cult (Chủng chuẩn định lượng)
- Culti-Loops (chủng chuẩn định tính)
- R21050 COAGULASE PLASMA
- Thermo Scientific™ Dry-Bags™ Buffer Peptone Water
- Chai ly tâm nhựa 1000ml Nalgene PPCO
- Phễu lọc môi trường chân không 1000ml
- Hôp đông lạnh tế bào Mr. Frosty™
- Máy hút dịch VACUSIP
- Máy hút dịch VACUSAFE
- Đĩa 96 giếng nuôi cấy tế bào
- TỦ LẠNH ÂM SÂU 477L
Lượt truy cập: 989711 |
Đang truy cập: 4 |
CM0727: DRBC AGAR BASE
DRBC AGAR BASE
Code: CM0727
Dichloran Rose-Bengal Chloramphenicol Agar là môi trường chọn lọc nấm men nấm mốc trong mẫu thực phẩm hư hỏng.
Thành phần |
g/lit |
Peptone |
5.0 |
Glucose |
10.0 |
Potassium dihydrogen phosphate |
1.0 |
Magnesium sulphate |
0.5 |
Dichloran |
0.002 |
Rose-Bengal |
0.025 |
Agar |
15.0 |
pH 5.6 ± 0.2 ở 25°C |
|
CHLORAMPHENICOL SELECTIVE SUPPLEMENT
Code: SR0078
Hàm lượng |
SR0078E |
SR0078H |
Mỗi lit |
Chloramphenicol |
50mg |
200mg |
100mg |
Hướng dẫn sử dụng
Hòa tan 15.75g trong 500ml (31.5g/l) nước cất và đun nóng cho tan hoàn toàn. Tái hòa tan 1 ống SR0078E trong 500ml môi trường hoặc 1 SR0078H trong 2 lit môi trường theo hướng dẫn. Thêm một ống chất bổ sung vào môi trường DRBC Agar Base. Khử trùng ở 121°C trong 15 phút. Làm mát đến 500C, trộn đều và đổ vào các đĩa petri.
Mô tả sản phẩm
Dichloran Rose-Bengal Chloramphenicol Medium (DRBC) dựa trên công thức mô tả bởi vua et al., Và được khuyến cáo như là một môi trường chọn lọc để phân lập và định lượng nấm men và nấm mốc có ý nghĩa trong thực phẩm bị hư hỏng.
DRBC là sự thay đổi của môi trường Rose-Bengal Chloramphenicol Medium và khác như sau: pH được giảm xuống, hàm lượng Rose-Bengal giảm xuống 50% và Dichloran được thêm vào.
Những thay đổi đó là để ức chế vi khuẩn phát triển, ức chế sự lan rộng Rhizopus và Mucor và làm cho môi trường có khả năng hỗ trợ sự phát triển của những loài mà không thể được phân lập trên Rose-Bengal Chloramphenicol Agar hoặc axit hóa Potato Dextrose Agar.
Sự ức chế lây lan nấm mốc và hạn chế chung về kích thước khuẩn lạc trong định lượng và phát hiện các nấm mốc mycotoxigenic và các loài khác có ý nghĩa trong sự hư hỏng thực phẩm.
pH giảm trong môi trường DRBC Agar làm tăng sự ức chế của nấm men bởi Rose-Bengal và sử dụng Rose-Bengal Chloramphenicol Agar (pH 7,2) song song nên được xem xét khi cần để định lượng các loại nấm men nếu có mặt nấm mốc.
Yêu cầu kỹ thuật
- Chuẩn bị môi trường DRBC theo hướng dẫn sử dụng CM0727 và SR0078.
- Thêm 40ml mẫu thực phẩm vào 200ml peptone water 0.1% và dập mẫu khoảng 30 giây hoặc thêm vào 0.1% peptone water và lắc liên tục trong 30 phút
- Cấy 0.1ml mẫu đã chuẩn bị lên bề mặt môi trường.
- Ủ đĩa ở 25°C và kiểm tra sau 3,4, 5 ngày.
- Ghi nhận số khuẩn lạc trên mỗi gam thực phẩm.
Điều kiện bảo quản và hạn sử dụng
Bảo quản môi trường dạng bột ở 10-30°C và sử dụng đến ngày ghi trên nhãn.
Bảo quản môi trường đổ sẵn ở 2-8°C và sử dụng ngay.
Trạng thái
Môi trường dạng bột: dạng bột đồng nhất, màu hồng
Môi trường đổ sẵn: Gel màu hồng
Quản lý chất lượng
Đối chứng dương |
Kết quả dự tính |
Aspergillus niger ATCC®9642* |
Sợi nấm màu trắng / vàng, bào tử màu đen |
Saccharomyces cerevisiae ATCC® 9763* |
Phát triển tốt, KL màu hồng |
Đối chứng âm |
|
Escherichia coli ATCC® 25922 * |
Không phát triển |
Bacillus subtilis ATCC® 6633* |
Không phát triển |
Khuyến cáo
ROSE-BENGAL oxi hóa để tạo thành phức hợp gây độc. Bảo quản đĩa môi trường trong tối và tránh tiếp xúc với ánh sáng.
Một số chủng nấm có thể bị ức chế trên môi trường này.
Phức hợp dichloran được sử dụng trong môi trường này là Botran® 2,6-Dichloro-4-Nitro-Analine (CAS: 99-30-9).
Tài liệu tham khảo
1. King D. A. Jr., Hocking A. D. and Pitt J. I. (1979) J. Appl. & Environ. Microbiol. 37. 959-964.
2. Pitt J. I. (1984) Personal Communication.
3. Jarvis B. (1973) J. Appl. Bact. 36. 723-727.
4. Sharp A. N. and Jackson A. K. (1972) Applied and Environmental Microbiology. 24(2). 175-178.
5. Sharf J. M. (ed) (1966) 2nd ed American Public Health Association, New York.
6. Thomson G. F. (1984) Food Microbiol. 1. 223-227.
7. Seiler D. A. L. (1985) Int. J. Food Techn. 2. 123-131.
8. Kramer C. L and Pady S. M. (1961) Trans. Kan. Acad. Sci. 64. 110-116.